Scheda programma d'esame
TECNOLOGIE DELLA RIPRODUZIONE AVANZATE NEGLI ANIMALI DOMESTICI
(ADVANCED REPRODUCTIVE TECHNOLOGIES IN DOMESTIC MAMMALS )
ALESSANDRA ROTA
Anno accademico2019/20
CdSMEDICINA VETERINARIA
Codice407GG
CFU3
PeriodoSecondo semestre
LinguaInglese

ModuliSettoreTipoOreDocente/i
ADVANCED REPRODUCTIVE TECHNOLOGIES IN DOMESTIC MAMMALSVET/10LEZIONI44
ALESSANDRA ROTA unimap
Obiettivi di apprendimento
Learning outcomes
Conoscenze

L’attività formativa è volta allo studio delle tecnologie della riproduzione, in particolare di metodi avanzati per la valutazione e conservazione del seme e tecniche per la raccolta, valutazione e maturazione degli oociti, capacitazione e selezione degli spermatozoi e fertilizzazione in vitro.

L'obiettivo del corso è di far acquisire allo studente specifiche conoscenze su: la preparazione dei media, la gestione del laboratorio, le tecniche di selezione e congelamento degli spermatozoi e degli embrioni, la gestione delle donatrici e delle riceventi.

Gli obiettivi formativi saranno raggiunti anche attraverso una parte importante dedicata all’applicazione pratica delle nozioni acquisiste

Knowledge

The training activity is aimed at the study of reproductive technologies, in particular advanced methods for semen evaluation and preservation and techniques for harvesting, assessing and maturing oocytes, capacitation and selection of sperm and in vitro fertilization.

The aim of the course is to get the student specific knowledge about: media preparation, laboratory management, sperm selection and freezing techniques and embryos, the management of donors and recipients.

The training objectives will also be achieved through an important part dedicated to the practical application of the acquired notions.

Modalità di verifica delle conoscenze

Le conoscenze acquisite verranno verificate in itinere e al termine del corso mediante esame scritto.

Assessment criteria of knowledge

The knowledge acquired will be verified on and after the course by written examinations.

Capacità

Al termine del corso lo studente dovrà essere in grado di preparare i media per la conservazione del seme, selezionare e congelare spermatozoi ed embrioni, gestire le donatrici e le riceventi di embrioni.

Skills

At the end of the course the student must be able to prepare the media for semen preservation, select and freeze sperm and embryos, manage embryo donors and recipients.

Modalità di verifica delle capacità

La verifica delle capacità sarà effettuata durante l'esame finale, ma anche durante le attività pratiche, nel corso delle quali il docente osserverà le modalità di lavoro dello studente.

Assessment criteria of skills

The skill check will be carried out during the final exam, but also during practical activities, during which the teacher will observe the way the student works.

Comportamenti

Lo studente dovrà dimostrare di conoscere le norme di sicurezza e di comportamento in ambienti come i laboratori, gli ambulatori, le stalle e le scuderie. Lo studente dovrà inoltre saper lavorare in gruppo, comportarsi adeguatamente nei diversi ambiti secondo la normativa vigente sulla sicurezza ed avere un adeguato approccio al paziente e alle sostanze con cui entra in contatto in laboratorio, in conformità alle norme di sicurezza, di biosicurezza e del benessere animale.

Behaviors

The student will have to demonstrate that he knows the standards of safety and behavior in environments such as laboratories, clinics, stables and stables. The student will also need to be able to work in a group, behave appropriately in different areas under current safety regulations and have an adequate approach to the patient and the substances with which he comes into contact in the laboratory, in accordance with the rules of animal safety, biosecurity and welfare.

Modalità di verifica dei comportamenti

La verifica dei comportamenti sarà effettuata sia durante l'esame finale che durante le prove pratiche, quando mediante l'osservazione verranno valutati i comportamenti acquisiti dallo studente.

Assessment criteria of behaviors

The assessment of the behaviors will be carried out both during the final exam and during the practical tests, when the observation will assess the behaviors acquired by the student.

Prerequisiti (conoscenze iniziali)

Per frequentare il corso è necessaria la conoscenza della lingua Inglese (il corso è erogato in Inglese).

Per poter comprendere appieno quanto presentato durante le lezioni sono inoltre necessarie le conoscenze delle materie "Andrologia e Tecnologie della Riproduzione" e di "Patologia della Riproduzione e Clinica Ostertica". Ovviamente, per frequentare i corsi di cui sopra erano necessarie conoscenze di base, tra cui risultano essenziali per il presente corso le nozioni del 1° e 2° anno, in particolare anatomia e fisiologia dell'apparato riproduttore, oltre che argomenti di Farmacologia, di Malattie Infettive e Epidemiologia Veterinaria e di Sanità Pubblica Veterinaria.

 

Prerequisites

To attend the course you need knowledge of the English language (the course is provided in English).

In order to fully understand what was presented during the lessons, knowledge of the subjects "Andrology and Reproductive Technologies" and "Reproductive Pathology and Obstertic Clinics" is also required. Of course, to attend the aforementioned courses, basic knowledge is needed, among which the notions of the 1st and 2nd year are essential for this course, in particular the anatomy and physiology of the reproductive system, as well as topics of Pharmacology, Infectious Diseases and Veterinary Epidemiology and Public Veterinary Health.

Indicazioni metodologiche

Modulo di TECNOLOGIE DELLA RIPRODUZIONE AVANZATE NEGLI ANIMALI DOMESTICI

Didattica teorica: 24 ore di lezioni frontali con l'ausilio di slides.
Area tematica: Ostetricia, riproduzione e patologie della riproduzione

Didattica pratica: 20 ore.
Area tematica: Ostetricia, riproduzione e patologie della riproduzione.

Organizzazione didattica pratica:
Area tematica: Ostetricia, riproduzione e patologie della riproduzione.
-Lavori di gruppo con supervisione: 0 ore
-Sessioni individuali di autoapprendimento:  0 ore
-In laboratorio o in aula: 0 ore
-Didattica pratica non clinica che coinvolge animali, carcasse o materiale di origine animale 12 ore
-Didattica pratica clinica all’interno delle strutture dell’Università 4 ore
-Didattica pratica clinica all’esterno delle strutture dell’Università 4 ore

L'attività didattica del corso prevede una parte teorica durante la quale lo studente assiste a lezioni frontali e a seminari monotematici e una parte pratica in cui lo studente pratica assieme al docente con crescente autonomia esercitazioni relative alla visita clinica dell'apparato riproduttore, iniziando dagli organi e continuando su animali che necessitano di una visita clinica. Saranno infatti svolte attività pratiche sia in laboratorio su organi e preparati citologici che in stalla sui bovini, in scuderie sui cavalli e in clinica sui cani.

 

Teaching methods

Module on ADVANCED REPRODUCTIVE TECHNOLOGIES IN DOMESTIC MAMMALS

Theoretical teaching: 24 hours of face lessons with the help of slides.
Thematic area: Obstetrics, reproduction and reproductive diseases

Practical education: 20 hours.
Thematic area: Obstetrics, reproduction and reproductive pathologies.

Practical teaching organization:
Thematic area: Obstetrics, reproduction and reproductive pathologies.
-Supervised group work: 0 hours
-Individual self-learning sessions: 0 hours
-In the lab or classroom: 0 hours
-Non-clinical practice involving animals, carcasses or animal material 12 hours
-Clinical practical teaching within the University facilities 4 hours
-Clinical practical teaching outside the University facilities 4 hours

The teaching activity of the course includes a theoretical part during which the student attends face-to-face lectures and monothematic seminars, and a practical part in which the student practices together with the teacher with increasing autonomy exercises related to the clinical examination of reproductive tracts, starting with the organs and continuing on animals in need of a clinical examination. Practical activities will be carried out both in the laboratory on organs and cytological preparations as well as in farm on cattle, in stables on horses and in the clinic on dogs.

 

Programma (contenuti dell'insegnamento)

Didattica teorica: 24 ore

4 ore: Laboratorio andrologico di base: Test di base e per ricerca clinica dell’integrità morfo-funzionale degli spermatozoi e sul plasma seminale (Incluso manuale WHO)

4 ore: Tecniche avanzate di valutazione e sessaggio degli spermatozoi: Analisi delle caratteristiche di motilità e subpopolazioni degli spermatozoi, Valutazioni multiparametriche delle caratteristiche degli spermatozoi mediante microscopio a fluorescenza e citometria di flusso. Interazioni spermatozoo / cellule dell’ovidutto.

6 ore: Tecniche di crioconservazione dei gameti e degli embrioni: Teoria della crioconservazione: azione sulla sopravvivenza e funzionalità della cellula (anche epigenetica); Metodi per ridurre i danni: Composizione dei media, crioprotettori vecchi e nuovi, preparazione delle dosi inseminanti per seme refrigerato e congelato, curve di congelamento, Vitrificazione, Valutazione dei risultati post crioconservazione: analisi di spermatozoi, oociti ed embrioni.

2 ore: Tecniche di valutazione degli oociti, isolamento e maturazione degli oociti (IVM), preparazione e capacitazione degli spermatozoi.

4 ore: Tecniche di fertilizzazione in vitro: media ed ambiente per IVF convenzionale, iniezione intracellulare dello spermatozoo (ICSI). Valutazione del successo dell’IVF: penetrazione dello spermatozoo, presenza di pronucleo maschile e femminile nell’oocita, presenza dei 2 globuli polari nello spazio perivitellino, divisione e formazione di due blastomeri (cleavage). Sviluppo dell’embrione in vitro: normale sviluppo, media e condizioni di sviluppo, stadi di sviluppo per congelamento e trasferimento nelle diverse specie. Metodi non invasivi per la valutazione dell’embrione: valutazione morfologica con stereomicroscopio, videoregistrazione in time-lapse, biomarker nel liquido di coltura (metabolismo dell’embrione). Biopsia dell’embrione per diagnosi pre-impianto o sessaggio. Sessaggio dell’embrione mediante antigene Hy. Splitting dell’embrione

4 ore: Gestione ottimale delle donatrici e riceventi di oociti ed embrioni. Ovum pick up, lavaggio uterino per la raccolta di embrioni, trasferimento di embrioni e risultati nelle diverse specie (Bovini, piccoli ruminanti, equini, suini, altre specie minori).

Didattica pratica: 20 ore

4 ore: Recupero degli spermatozoi dall’epididimo e loro valutazione (morfologia, motilità, valutazione con microscopio a fluorescenza)

4 ore: Preparazione dei media, congelamento e vitrificazione di gameti ed embrioni.

4 ore: Valutazione dei risultati post crioconservazione: analisi di spermatozoi ed embrioni. Set up per IVM e valutazione dello stato di maturazione nucleare dell’oocita.

4 ore: visita ad un laboratorio di riproduzione animale

4 ore: gestione di un gruppo di riceventi equine, lavaggio uterino per il recupero di un embrione, trasferimento embrionale.

Syllabus

Theoretical teaching: 24 hours

4 hours: Basic andrological laboratory: Basic and clinical research testing of the morpho-functional integrity of sperm and seminal plasma (Including WHO manual)

4 hours: Advanced sperm evaluation and sexing techniques: Analysis of the characteristics of motility and subpopulations of sperm, multi-parameter assessments of sperm characteristics using fluorescence microscope and flow cytometry. Interactions sperm /oviduct cells.

6 hours: Cryopreservation techniques of gametes and embryos: Theory of cryopreservation: action on survival and cell function (also epigenetics); Methods to reduce damage: Composition of the media, old and new cryoprotectants, preparation of inseminating doses for refrigerated and frozen semen, freezing curves, Vitrification, evaluation of post-cryopreservation results: analysis of sperm, oocytes and embryos.

2 hours: Oocyte evaluation techniques, oocyte isolation and maturation (IVM), sperm preparation and capacitation.

4 hours: In vitro fertilization techniques: medium and environment for conventional IVF, intracellular sperm injection (ICSI). Evaluation of IVF success: penetration of sperm, presence of male and female nucleus in oocites, presence of 2 polar body cells in the perivitellinum space, division and formation of two blastomers (cleavage). In vitro embryo development: normal development, medium and development conditions, stages of development for freezing and transfer in different species. Non-invasive methods for embryo evaluation: morphological assessment with stereomicroscope, time-lapse videorecording, biomarker in culture liquid (embryo metabolism). Embryo biopsy for pre-implantation or shearing diagnosis. Hy antigen sexing method. Embryo splitting

4 hours: Optimal management of donors and recipients of oocytes and embryos. Ovum pick up, uterine washing for the collection of embryos, transfer of embryos and results in different species (Cattle, small ruminants, equines, pigs, other minor species).

Practical teaching: 20 hours

4 hours: Recovery of sperm from epididim and their evaluation (morphology, motility, fluorescence microscope assessment)

4 hours: Media preparation, freezing and vitrification of gametes and embryos.

4 hours: Evaluation of post cryopreservation results: analysis of sperm and embryos. Set up for IVM and assessment of the nuclear maturation status of oocyte.

4 hours: Visit to an animal reproduction facility

4 hours: management of a group of equine recipients, uterine washing for the recovery of an embryo, embryo transfer.

Bibliografia e materiale didattico

Slides delle lezioni: saranno disponibili sulla piattaforma elearning moodle.
Selezione di articoli scientifici verranno distribuite agli studenti all'inizio del corso.

Libri consigliati per consultazione:

Anatomia, fisiologia
Hafez, ESE. Reproduction in Farm Animals, 7th Edition, Lea and Febiger, Philadelphia.

Cavallo
McKinnon, AO and Voss, JL. Equine Reproduction, 2nd Edition, Lea & Febiger, Philadelphia.

Altre specie (bovini, piccoli ruminanti, suini):
Youngquist R.S. – Current Theraphy in Theriogenology – W.B. Saunders Company.

 

Bibliography

Slide of lessons: they will be available on the elearning moodle platform.
Selection of scientific articles will be distributed to students at the beginning of the course.

Recommended books for consultation:

Anatomy, physiology
Hafez, ESE. Reproduction in Farm Animals, 7th Edition, Lea and Febiger, Philadelphia.

Horse
 McKinnon, AO and Voss, JL. Equine Reproduction, 2nd Edition, Lea & Febiger, Philadelphia.

Other species:
Youngquist R.S. – Current Theraphy in Theriogenology – W.B. Saunders Company.

 

Indicazioni per non frequentanti

Il corso è a frequenza obbligatoria attestata mediante il recupero delle firme in aula. Gli studenti lavoratori e gli studenti con specifici problemi possono richiedere al Corso di Laurea esenzioni parziali della frequenza.

Non-attending students info

The course is at a mandatory frequency attested by the recovery of signatures in the classroom. Student workers and students with specific problems can apply for partial exemptions from attendance in the Graduate Course.

Modalità d'esame

Prove scritte, che hanno lo scopo di valutare le conoscenze teoriche e pratiche del programma di esame.

Assessment methods

Written tests, which aims to evaluate the theoretical and practical knowledge of the exam program.

Ultimo aggiornamento 20/12/2019 08:11