Scheda programma d'esame
CYTOLOGY AND HISTOLOGY
MICHELA ORI
Academic year2017/18
CourseBIOLOGICAL SCIENCES
Code071EE
Credits9
PeriodSemester 1 & 2
LanguageItalian

ModulesAreaTypeHoursTeacher(s)
CITOLOGIA E ISTOLOGIABIO/06LEZIONI80
MICHELA ORI unimap
Obiettivi di apprendimento
Learning outcomes
Conoscenze

Tutti gli studenti acquisiranno le conoscenze di base nel campo della biologia cellulare e dell'istologia necessarie per poter affrontare tutti i corsi successivi.

Knowledge

The course aims to provide students with basic notions and concepts essential to the cultural heritage of a Biologist, as well as preparatory to the study of multiple academic disciplines in the curriculum. The student who successfully completes the course will be able to demonstrate a solid knowledge, at the morphofunctional and molecular level, of the cells of prokaryotes and eukaryotes and of the morphological and histo-physiological characters of the animal tissues. In addition, he will have acquired the ability to use the light microscope properly and the knowledge of the main techniques used in cell biology.

Modalità di verifica delle conoscenze

Non sono previste prove in itinere

Assessment criteria of knowledge

During the oral exam the student must be able to demonstrate his/her knowledge of the course material and be able to discuss any topic included in the examination program thoughtfully and with propriety of expression. In addition, the student must demonstrate skill in the use of the light microscope, as well as recognize, classify and discuss animal tissues present in one or two histological slides observed with this instrument.

Methods:

  • Final oral exam
Capacità

Conseguire le conoscenze di base nel campo della biologia cellulare per permettere a tutti gli studenti di avere solide basi in citologia e istologia necessarie per intraprendere un percorso da Biologo in qualsiasi campo della biologia.Gli studenti saranno inoltre in grado di riconoscere e analizzare le principali caratteristiche di un preparato istologico.

Modalità di verifica delle capacità

Durante lo svolgimento dei laboratori gli studenti potranno prendere visione e ragionare circa le tecniche istologiche e modalità di praparazione e taglio dei tessuti. La loro attiva partecipazione e lo scambio diretto di osservazioni con il docente permetterà agli studenti di verificare il loro grado di apprendimento e capacità di traslare le competenze teoriche acquisite a lezioni in problemi pratici.

Comportamenti

Tutti gli studenti acquisiranno le conoscenze di base nel campo della biologia cellulare necessarie per poter affrontare tutti i corsi successivi. Gli studenti potranno utilizzare e capire il funzionamento di microscopi ottici, allestiranno un loro preparato citologico ed avranno varie esperienze in laboratorio in cui potranno analizzare preparati istologici al microscopio ottenuti con diverse tecniche (immunoistochimica, ibridazione in situ)

Modalità di verifica dei comportamenti

Durante le sessioni di laboratorio saranno valutati il grado di accuratezza e precisione delle attività svolte

Prerequisiti (conoscenze iniziali)

Essendo un corso del primo anno le conoscenze iniziali sono molto diversificate. E' necessaria curiosità.

Prerequisiti per studi successivi

Questo corso rappresenta la base indispensabile per qualsiaso ramo della biologia lo studente vorrà seguire negli anni successivi e per qualsiasi attività lavorativa nel campo delle scienze biologiche, biomediche e biotecnologiche vorrà intraprendere.

Indicazioni metodologiche

Lezioni frontali, con ausilio di slides e filmati.

Per i laboratori gli studenti saranno divisi in gruppi

Il sito di elearning verrà usato per scaricamento materiali didattici, comunicazioni docente-studenti, e formazione di gruppi di lavoro per i laboratori

interazione tra studente e docente potranno essere costanti tra lezioni frontali, ricevimenti, tutoraggio e comunicazione agli studenti dell'indirizzo email e di telefono (ufficio) del docente

Teaching methods

Delivery: face to face

Learning activities:

  • attending lectures
  • Laboratory work

Attendance: Advised

Teaching methods:

  • Lectures
  • laboratory
Programma (contenuti dell'insegnamento)

 

  1. Presentazione del corso, limks utili, libro di testo consigliato, linee generali del programma di studio. Da dove derivano i nostri tessuti: i tre foglietti embrionali. Cenni cellule staminali embrionali e adulte e premio Nobel per la medicina 2012.
  2. Presentazione di moodle per iscrizione al corso. Componenti chimiche della materia vivente: Glucici, glicoproteine, proteoglicani,lipidi semplici e complessi,micelle e liposomi. Struttura proteine.
  3. Strutura del DNA. Il codice genetico. Come si passa dal gene alla proteina, cenni di trascrizione dell'mRNA,ruolo e struttura del tRNA, l'rRNA ribosomiale, cenni sulla traduzione proteica. I livelli di organizzazione "acellulare": virus e viroidi. Esempivari tra cui i batteriofagi e l'HIV. Caratteristiche generali delle cellule eucariotiche e procariotiche. La cellula batterica: caratteristiche generali, la parete batterica e la colorazione di Gram. Eucarioti unicellulari e pluricellulari. Cenni sui protozoi.
  4. La membrana plasmatica: fosfolipidi, sfingolipidi, colesterolo. Proteine di membrana. Modello proposto da Singer e Nicolson: membrana discontinua, fluida e asimmetrica.Zattere lipidiche o "lipid raft".
  5. La membrana plasmatica è selettivamente permeabile. Osmosi. Struttura e funzione delle acquaporine.Diffusione facilitata. Esempio di simporto Trasportatore Na+/glucosio. Canali regolati da voltaggio, ligandi o meccanicamente. La mutazione nel canale CFTR causa la fibrosi cistica. Esempi di proteine canale attivate da neurotrasmettitori.
  6. Prima Esercitazione in laboratorio GRUPPO A. Gli studenti hanno potuto utilizzare stereo microscopi e microscopi convenzionali per prendere visione di vari tipi di preparati. Ogni studente ha potuto osservare direttamente: embrioni di xenopus e zebrafish, preparati di ibridazione in situ whole mount, preparati istologici. Ogni studente ha poi allestito un suo vetrino citologico prelevando le proprie cellule epiteliali squamose dalla mucosa orale colorate con blu di metilene e osservarle al microscopio.
  7. Trasporto attivo. Gradiente elettrochimico. L'ATP. Potenziale di membrana. La pompa Na+/K+. La pompa protonica mantiene il pH Acido nel lisosoma. Diversificazioni della membrana apicale, basale e laterale, esempio la cellula intestinale.
  8. Premio Nobel per la fisiologia o la medicina 2013 “per la scoperta del macchinario che regola il traffico vescicolare". Fagocitosi, endocitosi, endocitosi mediata da recettore, il canestro di clatrina. proteine SNARE per il traffico vescicolare. (Michela Ori)
  9. Prima Esercitazione in laboratorio GRUPPO B.
  10. Giunzioni Cellula-cellula: classificazione e caratteristiche generali. Giunzioni occludenti: proteine coinvolte (ZO1, claudina, occludina, Jam). Giunzioni aderenti "a cintura". Le caderine. Caderine e adesione cellulare isotipica. Caderine e Transizione Epitelio Mesenchimatica.
  11. Giunzioni ancoranti cellula-cellula: desmosoma a macchia. Struttura del desmosoma. Emidesmosomi. Contatti Focali. Contatti focali e motilità cellulare. Migrazione cellulare collettiva. Giunzioni comunicanti o gap junction: connessine e connessoni. Giunzioni gap nella blastocisti.
  12. Prima Esercitazione in laboratorio GRUPPO C.
  13. Microscopia ottica, confocale ed elettronica: caratteristiche, funzioni ed impiego in citologia e istologia.
  14. Il citoscheletro. Caratteristiche e funzoni generali. Microfilamenti: l'actina. Fasi della Formazione del filamento di Actina. Proteine di nucleazione. proteine che legano l'actina: la timosina, miosina etc... La distrofina. Miosina e contrazione muscolare. Struttura dei filamenti di miosina. Tropomiosina e troponina. Meccanismo di contrazione.
  15. Struttura dei microvilli. Stereociglia. I microtubuli. Struttura del microtubulo. Polimerizzazione del microtubulo. Sostanze che inibiscono polimerizzazione dei microtubuli. MAP: microtubules associated proteins. proteine TAU e taupatie.
  16. MTOC: MicroTubules Organizing Centers. Movimento ciliare e flagellare Ciglia. Struttura delle ciglia. Assonema. La dineina. Struttura dei flagelli. Trasporto assonico. Chinesina e Dineina nel trasporto vescicolare assonico. (Michela Ori)
  17. Prima Esercitazione in laboratorio GRUPPO E.
  18. I filamenti intermedi. Classificazione. Filamenti intermedi di tipo IV: i neurofilamenti. Filamenti intermedi di tipo V: le lamine. La progeria. Assemblaggio dei filamenti intermedi. Stabilità dei filamenti intermedi e mitosi.
  19. Il reticolo endoplasmatico. Funzioni del reticolo endoplasmatico liscio. Reticolo endoplasmatico ruvido (RER) e sintesi proteica. Sequenza segnale per l'indirizzamento al RER. Ripiegamento proteine e stress al reticolo endoplasmatico. Modificazioni post traduzionali che avvengono nel RER: glicosilazione e formazione ponti disolfuro. RER per l'immagazzinamento di Ca++. Apparato di Golgi: descrizione e funzioni. Compar,mentalizzazione degli enzimi necessari alla glicosilazione.Smistamento delle vescicole in uscita dal Golgi.
  20. Le caratteristiche principali e l'utilizzo del microscopio ottico, le tecniche istologiche di base quali fissazione, inclusione preparazione sezioni istologiche, colorazione e montaggio dei vetrini. Il principio di funzionamento di microtomo e criostato evidenziando differenze ed esempi di utilizzo.
  21. I Lisosomi. Le idrolasi acide e la pompa protonica. Funzioni del lisosoma. Riconoscimento delle vescicole che dal Golgi vengono indirizzate al lisosoma. Esempio di patologia legata a disfunzioni lisosomiali:malattia di Tay-Sachs. I perossisomi caratteristiche generali.
  22. Funzioni dei perossisomi. La catalasi. I radicali liberi. Teoria dei radicali liberi e antiossidanti. I mitocondri: caratteristiche generali, struttura. Diversa composizione delle membrane interna ed esterna. Sulla membrana interna si trovano complessi proteici coinvolti nella respirazione cellulare (fosforilazione ossidativa) per la produzione di ATP. Catena respiratoria e sintesi di ATP. DNA mitocondriale e RNA mitocondriale. Replicazione del mitocondrio. Malattie mitocondriali. La teoria endosimbiontica.
  23. Gli studenti hanno potuto esaminare al microscopio ottico preparati istologici di vari tipi di epiteli con diversi tipi di colorazione. L'osservazione pratica è stata preceduta da una veloce introduzione sulla classificazione e caratteristiche principali degli epiteli. GRUPPI A e B.
  24. Metabolismo energetico della cellula. Funzioni cellulari che richiedono energia. La glicolisi avviene nel citoplasma. Ciclo di Krebs (cenni). Rendimento energetico della degradazione del glucosio: totale 36 ATP. Importazione proteine nei mitocondri. Complessi TIM e TOM.
  25. Altre funzioni del mitocondrio: accumulo ioni calcio, partecipazione alla sintesi ormoni steroidei (desmolasi), gluconeogenesi, ossidazione acidi grassi (cenni). Ruolo del mitocondrio nell'apoptosi. Antibiotici che alterano funzionamento ribosomi mitocondriali. Il nucleo: descrizione. Numero di nuclei e posizione del nucleo variano a seconda del tipo cellulare. Struttura dell'involucro nucleare. Reticolo Nucleoplasmatico. Struttura del complesso del poro nucleare. Laboratori  gruppo C e D.
  26. Modello di importazione nel nucleo di proteine provviste di segnale di localizzazione nucleare. Caratteristiche specifiche del trasporto nucleare. Il nucleoscheletro. La fosforilazione della làmina nucleare all’inizio della mitosi provoca la frammentazione dell’involucro nucleare. Geni e genomi (definizioni). Struttura di un gene eucariotico. Struttura e funzioni istoni. Struttura filamento di cromatina organizzato in nucleosomi.
  27. III Eesercitazione gruppo E.  IV esercitazione gruppo A. Gli studenti hanno potuto esaminare al microscopio ottico preparati istologici di vari tipi di tessuto connettivo con diversi tipi di colorazione. L'osservazione pratica è stata preceduta da una veloce introduzione sulla classificazione e caratteristiche principali dei tessuti connettivi.
  28. Eucromatina ed eterocromatina (facoltativa e costitutiva). Compensazione di dosaggio e corpo di Barr. Struttura del cromosoma. Territori cromosomici. FISH (principio della tecnica). Struttura dei Cromosomi e Cariotipo. Centromero, Cinetocore e Telomeri. La storia di Dolly come esempio di senescenza replicativa dovuta ar erosione dei telomeri.
  29. Come si studia il DNA? Metodo di sequenziamento del DNA di Sanger (principio base della tecnica). Tecnica Polymerase chain reaction (PCR). Il nucleolo: componente fibrillare e granulare. Sintesi degli rRNA. Cenni generali sul ciclo cellulare. Descrizione delle fasi del ciclo cellulare. I lieviti come modello per lo studio del ciclo cellulare.
  30. IV esercitazione gruppo B e C.
  31. Il macchinario molecolare del ciclo cellulare:cicline e chinasi ciclina dipendenti. I check point del ciclo cellulare (cenni). p53 il guardiano del genoma (struttura e funzione di base). Definizione di oncogeni e soppressori tumorali
  32. Analisi dettagliata delle fasi del ciclo cellulare. Fase G1. Fase S: replicazione del DNA e duplicazione centriol. Fase G2. Mitosi. Profase: condensazione cromatina, cromatidi e coesine. Metafase: fuso mitotico, cinetocore, check point del fuso mitotico. Anafase, Telofase e citodieresi.
  33. IV esercitazione gruppo D ed E.
  34. Riproduzione sessuata ed asessuata: vantaggi e svantaggi. Tipi di meiosi (intermedia, zigotica e gametica). Le fasi della meiosi. Nel diplotene avviene il crossing over. Formazione delle tetradi e complesso sinaptinemale. Crossing over. Metafase e telofase II. (Michela Ori)
  35. Esempio di come si passa dalla lettura di un articolo riguardante una scoperta scientifica di giornale divulgativo alla lettura di un articolo scientifico. Confronto dei contenuti, dei messaggi ed analisi dei dati presentati nel lavoro (immunoistochimiche, saggi su colture cellulari).
  36. V esercitazione gruppo A e B. Gli studenti hanno potuto esaminare al microscopio ottico preparati istologici di vari tipi di tessuto muscolare e nervoso. L'osservazione pratica è stata preceduta da una veloce introduzione sulla classificazione e caratteristiche principali di questi tessuti.
  37. Derivazione embrionale dei tessuti corporei. I tre foglietti embrionali. Concetti di base su cellule staminali pluripotenti, multipotenti, precursori e cellule differenziate. Divisioni simmetriche ed asimmetriche. Concetto di riprogrammazione cellulare. (Michela Ori)
  38. Morte cellulare: caratteristiche citologiche di necrosi e apoptosi. Apoptosi come evento fisiologico durante lo sviluppo embrinale e nella vita adulta. La via estrinseca dell'apoptosi coinvolge il mitocondrio. Autofagia cenni. Introduzione all'istologia. Concetti base: tessuto, organo apparato. Il tessuto epiteliale: origine embrionale, caratteristiche e funzioni. Epiteli di rivesimento semplici, pluristratificati e di transizione. Polarità della cellula epiteliale morfologica e funzionale.
  39.  V esercitazione gruppo C e D.
  40. Esempi di epitelio cilindrico semplice (Ovaio, stomaco). Esempio di epitelio pseudostratificato (trachea, epididimo). Microvilli, ciglia e stereociglia. Epiteli multistratificati cheratinizzati. Tipi cellulari presenti nell'epidermide.
  41. Tipi cellulari presenti nell'epidermide: cheratinociti, melanociti, cellule di Merkel, cellule di Langherans. Tessuti epiteliali ghiandolari: classificazione. Origine ghiandole esocrine ed endocrine. Secrezione merocrina, apocrina e olocrina. Ghiandole esocrine a secrezione merocrina: sierose, mucose e miste. Ghiandole unicellulari e pluricellulari. Classificazione ghiandole esocrine in base alla morfologia: tubulari, acinose etc. Ghiandole endocrine. Tipi di ormoni.
  42. V esercitazione gruppo E.
  43. Azione paracrina e autocrina degli ormoni. Trasporto degli ormoni nel sangue. Natura chimica degli ormoni. Legame degli ormoni ai recettori presenti nelle cellule target: recettori di membrana e recettori intracellulari. La secrezione ormonale è soggetta a regolazioni a feed back. Il sistema ipotalamo ipofisario. Adenoipofisi e neuroipofisi: origini. Adenoipofisi: cellule somatotrope e ormone della crescita.
  44. Adenoipofisi: Cellule Mammotrope o a Prolattina. Cellule gonadotrope: ormone follicolo stimolante FSH e ormone Luteinizzante LH e loro ruoli nella donna e nell'uomo. Cellule tireotrope e TSH. Epifisi: storia evolutiva (cenni), produzione di melatonina e rirtmi circadiani.
  45. Tiroide: caratteristiche istologiche e funzioni. Cellule follicolari e parafollicolari. Produzione e secrezione degli ormoni T3 e T4 e calcitonina. Recettori nucleari per T3. Paratiroidi: caratteristiche istologiche e funzioni. Paratormone e controllo dei livelli di calcio. Regolazione paratormone/calcitonina.
  46. Ghiandola surrenale. Zona midollare del surrene e produzione adrenalina e noradrenalina. Corticale del surrene: Zona Glomerulare e fascicolata e produzione di ormini mineralcorticoidi e glucocorticoidi. Zona reticolata e produzione di androgeni.Asse ipotalamo-ipofisi-surrene per la regolazione della funzionalità renale, metabolismo e risposta allo stress. Il pancreas: origine embrionale. Istologia del pancreas esocrino ed endocrino. Le isole di Langherans. Cellule alfa e beta per produzione di insulina e glucagone per la regolazione dei livelli di glucosio ematico. Diabete di tipo I e II (cenni). Il fegato. Gli epatociti possono produrre secreti esogeni ed endocrini. Organizzazione delle cellule epatiche e funzioni del fegato. Istologia del fegato e cirrosi. Introduzione ai tessuti connettivi. Tessuti connettivi lassi. Tessuti connettivi fibrosi a fasci intrecciati, a fasci paralleli e a fasci incrociati (derma, tendine). Connettivo reticolare ed elastico.
  47. Tessuto Cartilagineo. Cartilagine ialina. Cartilagine articolare. Cartilagine metafisiaria.Cartilagine elastica. Cartilagine fibrosa. Classificazione tessuto osseo e ossa. Osteoblasti, osteociti e osteoclasti.Organizzazione tessuto osseo lamellare. Tessuto osseo non lamellare: es la dentina.
  48. Il sangue. Composizione del sangue e formula leucocitaria. Come si effettua e si colora uno striscio di sangue. Globuli rossi, cenni di eritropoiesi. Formazione del reticolocita ed espulsione del nucleo.
  49. I gruppi sanguigni. Distruzione dei globuli rossi. Talassemie e anemia falciforme (caratteristiche principali). Globuli bianchi: origine, caratteristiche e funzione di Neutrofili, Eosinofili e Basofili. Linfociti B e T. Il sistema linfatico e i linfonodi. Immunità innata e immunità acquisita (concetti basilari). Plasmacellule e produzione anticorpi. Le allergie.
  50. Tessuto muscolare. Origine embrionale. Formazione del miotubo. Fibra muscolare e connettivo (endomisio, perimisio e epimisio). Caratteristiche della cellula muscolare striata scheletrica: sarcolemma, reticolo sarcoplasmatico, tubuli T, organizzazione dei filamenti contrattili. Giunzione neuro-muscolare. Recettori muscarinici per l'acetilcolina. Cellule satelliti. La distrofina.
  51. Tessuto muscolare cardiaco.Caratteristiche istologiche: striature, nucleo centrale, dischi intercalari. Differenze citologiche tra miocita e cardiomiocita. Giunzioni presenti al livello del disco intercalare. Il muscolo cardiaco è un sincizio funzionale. Sistema di conduzione del cuore. Innervazione da parte del sistema nervoso. Tessuto muscolare liscio. Esempi di muscolatura liscia (muscoli associati all'iride, ai bronchi, ai vasi e nel sistema digerente...). Caratteristiche della cellula muscolare liscia, contrazione, sistema calcio-calmodulina. Introduzione del sistema nervoso. Origine embrionale e patterning.
  52. La matrice extracellulare. Cenni generali e funzioni. i principali componenti della matrice: glicosamminogliani, proteoglicani e proteine fibrose. L'acido ialuronico e il recettore CD44. Esempi di proteoglicani: sintesi e degradazione. Il sindecano come molecola che facilita meccanismi di trasduzione del segnale. Il versicano nella rigenerazione del sistema nervoso. Applicazioni delle molecole della matrice in biomedicina e nelle biotecnologie.
  53. Il neurone. Dendriti e spine dendritiche. Il trasporto assonale. Tipi di neuroni classificati in base alla morfologia e alla funzione. La glia: astrociti, oligodendrociti, microglia e cellule ependimali. Plessi coridei e liquido encefalorachidiano. Mielinizzazione nel SNP: le cellule di Swhann. Colorazione istologica di un nervo mielinizzato. Organizzazione sostanza grigia e sostanza bianca nel cervello e nel midollo spinale. L'arco riflesso. Trasmissione dell'impulso nervoso: potenziale di riposo e potenziale d'azione. La trasmissione nelle fibre mielinizzate. La sinapsi chimica ed elettrica. Considerazioni finali sul corso.
Syllabus

Levels of protoplasm organization. Structure and ultrastructure of prokaryotic cells. General Morpho-functional analysis of eukaryotic cells: ultrastructural, cytophysiological and molecular characterization of the plasma membrane, of the nucleus and of the cytoplasmic organelles and structures. Cell cycle: phases and regulatory mechanisms. Cell differentiation and histogenesis. Analysis of the morphological and histophysiological characteristics of the various animal tissues.

Bibliografia e materiale didattico

Nelle slides della prima lezione di ogni anno (da scaricare su elearning) ci sono le indicazioni dei libri di testo e la spiegazione di come poter usufruire di tutto il materiale didattico iscrivendosi al corso su elearning

Bibliography

It is required the adoption of one of the texts included in each of the following groups: a) for the study of the foundations of Animal Embryology: HOUILLON: Embriologia dei Vertebrati (II edizione). Casa Ed. Ambrosiana FRANQUINET & FOUCRIER: Atlante di Embriologia Descrittiva. Ed. EdiSES b) for the study of the animal cell biology as well as of the morphology and histo- physiology of the animal tissues, using a single text for both sections: COLOMBO & OLMO (Eds.): Biologia - Cellula e Tessuti (II edizione). Ed. Edi.Ermes ADAMO & Al.: Istologia di V. Monesi (VI edizione). Ed. Piccin BONFANTI & Al.: Citologia e Istologia (II edizione). Idelson-Gnocchi Alternatively, preferring to use two separate texts: b) for the study of the animal cell biology: ALBERTS & Al.: Biologia molecolare della cellula (V edition). Zanichelli ALBERTS & Al.: L'essenziale di "Biologia molecolare della cellula" (III edition). Zanichelli HARDIN & Al.: Becker - Il mondo della cellula (VIII edizione). Pearson Ed. COOPER & HAUSMAN: La cellula. Un approccio molecolare. Piccin KARP: Biologia cellulare e molecolare (IV edition). EdiSES LEWIN & Al.: Cellule. Zanichelli LODISH & Al.: Biologia molecolare della cellula (III edition). Zanichelli c) for the study of the morphology and histo-physiology of the animal tissues: BLOOM & FAWCETT: Trattato di Istologia. McGraw-Hill GARTNER & HIATT: Istologia (III edition). EdiSES

Indicazioni per non frequentanti

I non frequentanti potranno trovare tutto il materiale didattico su iscrivendosi al corso su elearning.

 

Modalità d'esame

Gli esami saranno in forma orale o scritta a scelta dello studente

Stage e tirocini

Non sono previsti stages associati al corso ma il docente è disponibile ad ospitare nel proprio laboratorio studenti della laurea triennale al fine di svolgere 150ore di  Laboratorio di Biologia Sperimentale.

Updated: 03/04/2018 14:46