Scheda programma d'esame
BIOCHIMICA APPLICATA
MARIA ROSA MAZZONI
Anno accademico2019/20
CdSCHIMICA E TECNOLOGIA FARMACEUTICHE
Codice022EE
CFU9
PeriodoSecondo semestre

ModuliSettoreTipoOreDocente/i
BIOCHIMICA APPLICATABIO/10LEZIONI84
CHIARA GIACOMELLI unimap
MARIA ROSA MAZZONI unimap
Obiettivi di apprendimento
Learning outcomes
Conoscenze

Lo studente acquisirà conoscenze teoriche e pratiche sulle metodologie e le tecnologie utilizzate nello studio della struttura e della funzione delle macromolecole biologiche.

Knowledge

The student who completes the course successfully will be able to demonstrate a solid knowledge on the analytical aspect of biochemistry. He or she will acquire knowledge of several analytical techniques such as spettroscopy, chromatography, centrifugation, electrophoresis, etc. Finally, he or she will be aware of those technical approaches used to purify and quantify proteins and nucleic acid, measure enzymatic activity in biological samples, detect and quantify antigens using specific antibodies, detect biomolecule interaction using radio- or fluorescent-labeled ligands

Modalità di verifica delle conoscenze

Per l'accertamento delle conoscenze acquisite saranno svolti sia una prova in itinere scritta al termine dell'attività di laboratorio (domande a risposta multipla ed esercizi) che un esame finale scritto (tre domande aperte, 2 domande a risposta multipla od 1 domanda a risposta multipla ed 1 esercizio).

Assessment criteria of knowledge

At the end of the laboratory stage a written test is carried out in which the student must demonstrate his/her knowledge of the biochemistry laboratory practice. In the written final exam (1 hour, 3 open questions; 2 multiple choice questions or 1 multiple choice question and 1 exercise), the student must demonstrate his/her knowledge of the course material and to organise an effective and correctly written reply.

Capacità

Al termine del corso lo studente conescerà e sarà anche in grado di utilizzare varie metodiche per lo studio e la purificazione di proteine ed acidi nucleici.

Skills

At the end of the Applied Biochemistry course, students will know and be able to use  various methods to study and purify both proteins and nucleic acids.

Modalità di verifica delle capacità

Durante la sessione di laboratorio gli studenti, suddivisi in gruppi, utilizzeranno metodiche per determinare la concentrazione proteica in un campione biologico, per frazionare un campione, per determinare l'attività enzimatica e ricavarne i parametri all'equilibrio, per separare le proteine e gli acidi nucleici mediante elettroforesi, e per effettuare saggi immunoenzimatici. Al termine del periodo di laboratorio l'acquisizione delle capacità pratiche verrà valutata mediante tests a risposta multipla e/o brevi relazioni.

Assessment criteria of skills

During the laboratory stage, students will use methods to measure protein concentration in biological samples, separate cellular components by differential centrifugation, assay enzymatic activity and calculate Km and Vmax, saparate proteins and nucleic acids by electrophoresis, and perform ELISA. At the end of this stage, acquisition of laboratory knowledge will be assessed with a written test.

Comportamenti

Lo studente acquisirà le conoscenze ed i comportamenti atti a permettergli di svolgere attività di analisi e di ricerca in un laboratorio biochimico.

Behaviors

Students will acquire knowledge and behaviors which will allow to carry out analytical and research activities in a biochemistry laboratory.

Modalità di verifica dei comportamenti

Durante la sessione di laboratorio sarà valutato il grado di accuratezza e precisione dell'attività svolte.

Assessment criteria of behaviors

During the laboratory stage, students' accuracy and skills will be evaluated.

Prerequisiti (conoscenze iniziali)

Sono richieste conoscenze teoriche di biologia cellulare, di chimica e chimica organica, e di biochimica.

Prerequisites

The student must possess knowledge of cellular biology, chemistry, organic chemistry, and biochemistry.

Indicazioni metodologiche
  • Frequenza alle lezioni teoriche in aula
  • Frequenza all'esercitazioni in aula
  • Frequenza all'attività di laboratorio
  • Studio individuale

La frequenza è obbligatoria (60-70% delle lezioni; 30% delle lezioni per studenti lavoratori/genitori)

 

Teaching methods

Delivery: face to face

Learning activities:

  • attending lectures
  • participation to seminars
  • individual study
  • laboratory work

Attendance: Mandatory

Teaching methods:

  • Lectures
  • Seminar
  • laboratory
Programma (contenuti dell'insegnamento)

Richiami sulla struttura delle cellule eucariotiche e procariotiche. Le colture di cellule eucariotiche, loro separazione, analisi e conteggio.

LE PROTEINE: 1) Estrazione delle proteine da tessuti animali e culture cellulari. Allestimento di omogenati d’organo, di lisati cellulari; frazionamento dei componenti subcellulari. 2) Determinazione quantitativa delle proteine totali: dosaggio dell’azoto proteico, metodi del biureto, di Folin-Ciocalteau, di Lowry; spettrofotometria diretta con applicazione delle formule di Kalckar-Warburg, turbidometria, nefelometria. 3) Determinazione qualitativa e quantitativa delle proteine mediante saggi di attività biologica: a) saggi di attività enzimatica «in vitro», criteri orientativi per la scelta delle condizioni di saggio (temperatura, pH, concentrazione dell’enzima e del substrato, cofattori, tempi di incubazione), calcolo delle unità e dell’attività specifica; b) determinazione immunologica delle proteine: generalità sugli anticorpi mono- e policlonali; saggi di immunodiffusione, saggi radioimmunologici (RIA), saggi immunoenzimatici (ELISA). 4) Tecniche radioisotopiche: rilevazione e misura della radioattività; utilizzo di molecole radiomarcate in biochimica; studio di proteine di legame mediante ligandi radiomarcati (studi di legame all’equilibrio e studi di competizione). 5) Metodi di purificazione delle proteine: precipitazione frazionata al calore, al punto isoelettrico, con solventi organici e sali neutri. Centrifugazione frazionata in mezzo omogeneo ed in gradienti di densità continui e discontinui. Tecniche cromatografiche (gel filtrazione, a scambio ionico, di affinità, cromatografia liquida ad alta pressione); tecniche elettroforetiche: elettroforesi su gel di poliacrilammide (in condizioni native e denaturanti), immunoelettroforesi, elettrofocusing, elettroforesi bidimensionale. Criteri di purezza delle preparazioni proteiche: cristallizzazione, ultracentrifugazione, disc-elettroforesi, curve di solubilità. Ingegnerizzazione di proteine per la purificazione. 6) Determinazione della struttura proteica: analisi di aminoacidi; determinazione della struttura primaria.

GLI ACIDI NUCLEICI 1) Composizione e struttura degli acidi nucleici: DNA e RNA. 2) Isolamento e separazione degli acidi nucleici: separazione dalle macromolecole proteiche mediante fenolizzazione, frazionamento degli acidi nucleici per centrifugazione in gradienti di densità autoformati, per cromatografia ed elettroforesi in gel di agarosio e poliacrilammide. 3) Il comportamento del DNA in soluzione, la denaturazione del DNA, la renaturazione, il punto di fusione. Determinazione spettrofotometrica quantitativa del DNA e RNA. 4) Manipolazione degli acidi nucleici: gli enzimi di restrizione.

TECNICHE AVANZATE: 1) Fluorimetria e spettrofluorimetria: applicazioni. 2) Chemiluminescenza e bioluminescenza: applicazioni. 3) Risonanza Magnetica Nucleare (NMR): applicazioni in biologia. 4) Spettrometria di massa: applicazione allo studio delle proteine. 5) Risonanza plasmonica di superficie (SPR): applicazione per lo studio dell’interazione delle biomolecole.

ESERCITAZIONI PRATICHE DI LABORATORIO: 1) Saggi di attività enzimatica: cinetica enzimatica dell’adenosina deaminasi; dipendenza della cinetica enzimatica dal pH; dosaggio dell’enzima lattico deidrogenasi. 2) Frazionamento subcellulare. 3) Determinazione quantitativa delle proteine totali: metodo del biureto e di Bradford. 4) Separazione elettroforetica di proteine su gel di poliacrilammide in condizioni denaturanti. Western-blot. 5) Separazione elettroforetica del RNA totale su gel di agaroso. 6) Immunodosaggio: ELISA di tipo competitivo od a sandwich.

Syllabus

The course provides notions on protein purification, quantification, identification and sequencing as well as nucleic acid separation, quantification, degradation and sequencing. The course also approaches the topics of enzymatic and immunological assays, and the use of radioisotope in biological assays. The second part of the course presents an overview of the use of luminescence and fluorescence in various biochemical techniques, surface plasmon resonance approach to study biomolecule interactions, and mass spectrometry to identify and investigate proteins.

Bibliografia e materiale didattico

Testi consigliati

  • D.L. Nelson, M.M. Cox: PRINCIPI DI BIOCHIMICA DI LEHNINGER. Zanichelli 2010;
  • C. De Marco, C. Cini: PRINCIPI DI METODOLOGIA BIOCHIMICA. Piccin 2009;
  • M.C. Bonaccorsi Di Patti, R. Contestabile, M.L. Di Salvo: METODOLOGIE BIOCHIMICHE. Casa Editrice Ambrosiana 2012;
  • A.J. Ninfa, D.P. Ballou: METODOLOGIE DI BASE PER LA BIOCHIMICA E LA BIOTECNOLOGIA. Zanichelli, 2000;
  • B. Mondovì : BIOCHIMICA APPLICATA. Idelson 1977.
Bibliography

Recommended reading includes the following works: Metodologie Biochimiche. M.C. Buonaccorsi di Patti et al. Casa Editrice Ambrosiana (2012). Principi di Metodologia Biochimica. C. De Marco e C. Cini. Piccin Editore (2009). Analytical Biochemistry. D.J. Holme & H. Peck. Logman Scientific Group UK Limited (1993).

Modalità d'esame

L'esame è composto da:

  • Una prova in itinere al termine dell'attività di laboratorio che verterà su argomenti affrontati durante tale attività. Tale prova sarà scritta con tests a risposta mutipla ed esercizi.
  • Una prova finale scritta sarà costituita da tre domande aperte su argomenti svolti durante il corso, una domanda a risposta multipla o similare su argomenti riguardanti le tecnologie avanzate, ed eventaulmente una domanda in cui si richiede di svolgere un calcolo che potrebbe essere necessario lavorando in un laboratorio di biochimica.

 

Assessment methods

The following tests will be required:

  • At the end of the laboratory stage,  a written test concerning laboratory activities will be performed. The test will be composed by open and multiple choice questions.
  • The final written test will be focused on topics of the lectures. Basically, the test will be composed by three open questions, one question with multiple choices and a question to evaluate the ability to perform simple calculations which are required in a biochemistry laboratory.
Ultimo aggiornamento 13/08/2019 18:08